Anar al contingut

Tinción diferencial

De L'Enciclopèdia, la wikipedia en valencià

Per a poder observar les característiques morfològiques de les bactèries, s'utilisen les preparacions fixes i teñir, degut a que estes permeten que les cèlules es visualisen de millor manera i es puguen diferenciar les distintes espècies per la seua coloració, a este método se li nomena tinción diferencial o selectiva.

La morfologia de la bactèria és visible degut a que els colorants utilisats en el procés teñir la superfície permetent canviar de color a les bactèries, açò ajuda a tindre una definició clara al moment d'observar en el microscopi òptic.

Esta tinción requerix de més d'un tipo de colorant, consistix en tres passos fonamentals: primer un colorant primari, el qual s'utilisa per a teñir a totes les cèlules en la tinción; despuix es procedix a la decoloración, el qual remou el colorant solament de certs tipos de cèlules i finalment un colorant de contrast, est teñir les cèlules que es decoloraron.

Els colorants més utilisats són: blau de metileno, cristal violeta, safranina, estos són catiónicos i es combinen fortament en components celulars carregats negativament, com els àcit nucleicos i els polisacàrits àcits.[1]

Tipos de Tinción

[editar | editar còdic]

Tinción de Gram

[editar | editar còdic]

En 1884, Christian Gram, bacteriólogo danés, va desenrollar una tècnica de tinción que se li atribuïx pel seu llinage. Esta tècnica va permetre separar a les bactèries en dos grans grups: les grampositivas i les gramnegativas, depenent de si retenen el colorant en la seua paret o no despuix del procés de decoloración.[2]

Mostra: Kumis. Lent objectiu: 100x. Identificació: Círcul vert: bacil. Círcul blau: cocos Gram positius. Círcul groc: diplococ Gram positiu. Círcul taronja: estreptococ Gram positiu. Observacions: En la mostra de Kumis s'observa bacil Gram positiu, cocos Gram positius disposts en diplococs i estreptococs. La mostra és de color rosat pel color del yogurt kumis i es presenten algunes taques blanques.

La tinción de Gram està basada en la diferenciació de la composició química de la paret celular bacteriana; per a lo que s'ampren quatre composts: cristal violeta, mordiente-lugol, decolorante alcohol-cetona i colorant de contrast safranina.[3]

Açò dividix a les bactèries en Gram positives, que s'teñir de violeta puix tenen una grossa capa de peptidoglicano o mureína, i Gram negatives, que tenen una capa més fina per lo que no mantenen el colorant primari (cristal violeta).

Els passos a seguir per a la tinción de les bactèries són fer el fregada, la fixació i l'aplicació de les solucions colorants. L'àmplia gama de colorants que es poden utilisar ha obligat a separar-los en tres grups generals: els de trifenilmetano, els d'oxacina i els de tiacina. Esta classificació és útil per a la distinció de les famílies de colorants, pero en general s'utilisa la classificació d'acort al seu caràcter àcit-base, és dir, àcit, bases o neutres, degut a que d'açò depén molt el seu comportament.

La coloració es dona d'acort en l'acció dels ions complexos del colorant i els llocs actius de la superfície o de l'interior de la cèlula.


Entre els diversos tipos de coloració de bactèries estan la coloració simple, diferencial i la tinción negativa.[4]

Preparació d'un frotis per a la tinción

[editar | editar còdic]
Archiu:Tincion Gram.png
Bacil Gram positius (color morat), mostra observada en lent 100x en el laboratori de biologia celular de l'Universitat de les Forces Armades ESPE, Sangolquí, Equador.

En un portaobjetos de vidre que deu estar completament net i sec, si el material és líquit es coloca una gota, o si és un material diferent com el sarro dental, es fa rodar l'hisop en el que es va prendre la mostra. Pot usar-se una agulla estèril per a colocar una chicoteta cantitat d'un cultiu bacterià en la superfície del portaobjetos. Este material se suspén en una gota d'aigua o solució salina prèviament colocada sobre el portaobjetos. El material es frega directament sobre el portaobjetos, a on pot visualisar-se en facilitat. El material colocat deu fixar-se; és el procés a on es conserven i es fixen les estructures internes i externes de les cèlules. Per a la tinción de Gram es realisarà una fixació física, és dir, de calor en una mistera a una temperatura resistent al tacte de la mà.[5]

Fixació de Mostres
[editar | editar còdic]

La fixació és el procés a on es conserven i fixen en la seua posició les estructures internes i externes de les cèlules. Es mata al microorganisme i es fixa al portaobjetos cobrint-ho necessàriament en un cubreobjetos.[6]

Existixen dos tipos de fixació:

  1. Fixació física: esta fixació solament requerix de factors físics com la calor o el fret.
  2. Fixació química: utilisa substàncies químiques com el metanol, àcit acètic i formaldehit.

Passos de Tinción de Gram[7]

[editar | editar còdic]
  • Es coloca una chicoteta gota d'aigua destilada en el portaobjetos.
  • Secar l'aigua sostenint el portaobjetos damunt d'una mistera o llàntia d'alcohol.
  • Colocar cristal violeta cobrint la mostra per 1 minut aproximadament. Es llava la mostra en aigua.
  • Agregar el lugol a la mostra, s'espera 1 minut i després es llava en aigua.
  • Cobrir la mostra en alcohol-acetona per a decolorar; es cobrix la mostra en un temps de 15 a 30 segons.
  • S'agrega una tinción de contrast per a teñir les bactèries que perden el cristal violeta. Per a açò, s'agrega safranina cobrint la mostra de 15 segons a 1 minut.
Archiu:Tincion gran cocos gram Negativos.png
Cocos Gram negatius (color roig-rosat), mostra observada en lent 100x en el laboratori de biologia celular de l'Universitat de les Forces Armades ESPE, Sangolquí, Equador.

Utilitat de cada colorant en la Tinción de Gram[8]

[editar | editar còdic]

Cristal violeta: És el colorant catiónico que penetra en totes les cèlules bacterianes, tant Gram positives com Gram negatives, a través de la paret bacteriana.


Lugol: És un compost format per yodo en equilibri en yodur de potassi i siluterio, els quals estan presents per a solubilizar el yodo. Açò fa que el cristal violeta es fixe en major intensitat. El yodo entra en les cèlules i forma un complex insoluble en solució acuosa en el cristal violeta.

Mescla d'alcohol: Servix per a realisar la decoloración, ya que en la mateixa el complex yodo/cristal violeta és soluble; les bactèries Gram positives no es decoloran, mentres que les bactèries Gram negatives sí.

Safranina: S'utilisa per a fer una tinción de contrast que posa de manifest les bactèries Gram negatives. Al final del protocol, les bactèries Gram positives es voran blava-violeta i les bactèries Gram negatives roges o roses.

Mecanisme de la tinción de Gram

[editar | editar còdic]
  • La diferència entre Gram positiu (+) i Gram negatiu (–) es deu provablement a la naturalea física de les seues parets celulars.
  • El peptidoglicano actua com a barrera de permeabilidad, evitant la pèrdua de cristal violeta.
  • Es creu que el decolorante etanol o cetona en les Gram positives (+) contrau els poros del gros peptidoglicano, retenint el cristal violeta, mentres succeïx lo contrari en el fi peptidoglicano de les Gram negatives.

Bactèries resistents a la Tinción de Gram

[editar | editar còdic]

Les següents bactèries de naturalea gram positiva s'teñir com gram negatives:

Recomanacions per a la tinción de Gram[9]

[editar | editar còdic]

Per a obtindre una bona làmina és necessari prendre en conte algunes precaucions, tant per a la preparació del frotis com en l'observació al microscopi.

1.- Estés: es deu tindre en conte que l'estés en la làmina en el cultiu bacterià (mostra) deu ser fi, de lo contrari no serà visible en el lent del microscopi; és dir, que les estructures no es podran evidenciar.

2.- Fixació: si no hi ha una correcta fixació del cultiu (mostra), és provable que les cèlules bacterianes es perguen durant el procés de fixació.

3.- No perdre de vista el lloc a on està la mostra, colocar de manera correcta el portaobjetos, i de la mateixa forma una volta que la làmina està en la platina del microscopi.

5.- Es deu observar en els diferents lents objectius, de manera que es puguen focalizar i diferenciar les estructures.

Tinción de Ziehl-Neelsen[10]

[editar | editar còdic]

És una tècnica de tinción diferencial ràpida i econòmica. S'identifiquen microorganismes patógenos; va ser descrita per primera volta pels meges alemans, el bacteriólogo Franz Ziehl i el patólogo Friedrich Neelsen.

Les parets celulars de certs paràsits i bactèries contenen àcit grassos de cadena llarga que els conferixen la propietat de resistir la decoloración àcit-alcohol, despuix de la tinción en colorants bàsics; per açò li'ls denomina àcit-alcohol resistents, com per eixemple les micobacterias i els paràsits coccídeos. La coloració clàssica de Ziehl-Neelsen requerix calfament per a que el colorant travesse la paret bacteriana que conté ceres; en suspendre el calfament i gelar en aigua, es provoca una nova solidificació dels àcit grassos, de modo que el colorant ya no pot eixir de les bactèries.

Procediment per a la Tinción de Ziehl-Neelsen

[editar | editar còdic]
  • Hidratar i desparafinar els corts.
  • Colocar àcit periòdic al 5% per 10 minuts.
  • Llavar en aigua destilada.
  • Agregar fucsina fenicada per 15 minuts.
  • Decolorar en alcohol àcit al 1%.
  • Llavar en aigua destilada.
  • Posar la hematoxilina durant 10 minuts.
  • Azulidificar en carbonat de liti.
  • Deshidratar, aclarir i montar la mostra; la mostra pot ser histológica o citològica.
Archiu:Tinción tinta china.png
Mostra de sarro en tinción de tinta chinenca, s'observen les càpsules. Microscopi en lent 40x, en el laboratori de biologia celular de l'Universitat de les Forces Armades ESPE.

Tinción d'àcit-alcohol resistència[12]

[editar | editar còdic]

Mycobacterium no s'unix fàcilment a colorants simples i cal teñir en un tractament més fort. Este tractament consistix en calfar una mescla de fucsina bàsica i fenol. Una volta que la fucsina ha penetrat en l'ajuda de la calor i el fenol, les cèlules àcit-alcohol resistents no es decoloran en una solució àcit-alcohòlica, permaneixent de color roig. Mentres que les bactèries no àcit-alcohol resistents es decoloran en la solució i s'teñir de blava de metileno (tinción de contrast).

Tinción de endosporas

[editar | editar còdic]

La morfologia i localisació varien en l'espècie; poden ser esfèriques a elíptiques, en un diàmetro menor o superior al de la bactèria mare. En el método de Fulton, les endosporas s'teñir primer calfant les bactèries en vert de malaquita i es contratiñen en safranina. En els resultats es podran vore les endosporas teñir de color vert en cèlules de color rosa o roig.

Tinción d'estructures específiques

[editar | editar còdic]

La tinción negativa revela la presència de càpsules al voltant de la bactèria. Per a realisar esta tinción es mesclen les bactèries en tinta chinenca o nigrosina i s'estén en una capa fina sobre un portaobjetos. En el microscopi es podrà observar que apareixen cossos més clars degut a que la tinta no penetra ni la cèlula ni la càpsula.

Tinción de flagelos

[editar | editar còdic]

Per a que els flagelos siguen visibles en un microscopi és necessari aumentar la seua gruixa en mordientes tals com àcit tánico, alum de potassi, pararosanilina o fucsina àcida.


Referències

[editar | editar còdic]
  1. «Processos bacteriològics». Consultat el 21 d'abril de 2010.
  2. Vizcarrondo, Milacres & Gutiérrez, Sofia. «Treballe pràctic Nº 6 MORFOLOGÍA I TINCIÓN DE LOS MICROORGANISMOS». Consultat el 17 de giner de 2017.
  3. Santambrosio, Eduardo (2009). Càtedra de Biotecnologia.
  4. Clavell, Pedrique de Aulacio, Luis, Magaly (1992). Micro biologia. Manual de Métodos Generals., Veneçola.
  5. Quistian Hilary. «Métodos i tècniques de tinción». Consultat el 21 de novembre de 2016.
  6. Universitat de Vigo. «Tècniques histológicas- Métodos de Fixació». Consultat el 21 de febrer de 2017.
  7. Vizcarrondo Milacres, Gutierres de Gamboa Sofia. «Morfologia i tincion dels micro-organismes». Consultat el 29 de novembre de 2016.
  8. Medigraphic.org.Consultat el 25 de novembre de 2016.
  9. Vizcarrondo, Milacres &Gutiérrez Sofia. «Treballe pràctic Nº 6 MORFOLOGÍA I TINCIÓN DE LOS MICROORGANISMOS». Consultat el 18 de giner de 2017.
  10. Rodríguez Evelyn, Gamboa María, Hernández Francisco, García Jorge (2005). Bacteriologia General: Principi i pràctiques de laboratori, Costa Rica.
  11. 2008.Consultat el 20 de giner de 2017.
  12. Troya Hafet. «Laboratori de microbiologia». Consultat el 1 de decembre de 2016.